Lipid structural information from a single equine embryo by MALDI-MS | Informação estrutural de lipídios a partir de um único embrião equino pela técnica de MALDI-MS

O objetivo deste trabalho foi relatar o potencial da técnica de MALDI-MS para caracterizar espécies de lipídios presentes em um único embrião equino e estudar algumas estruturas lipídicas detectadas por dissociação induzida por colisão (CID). No espectro de modo íon positivo, pudemos observar espécies, principalmente, protonadas e sodiadas de esfingomielinas (SM), fosfatidileolinas (PC) e triacilgliceróis (TAG). No modo negativo, observamos fosfatidiletanolaminas (PE) e fosfatidilinositos (PI). Espectros de íons de lípidos com maior intensidade foram utilizados para demonstrar o potencial da informação estrutural por MALDI-MS/MS. O espectro no modo positivo de m/z (massa sobre carga) 760,6 (atribuída como PC34:1) apresentou características de fragmentos PC de m/z 184,1 (denominada cabeça polar de colina), além de perda neutral (NL) de m/z 183 (fosforilcolina). Para o íon de m/z 766,6 (atribuída como PE38:5), observou-se a NL de 140, característica do PE. Para o íon de m/z 808,7 (38,5 atribuído como PC), além do fragmento m/z 184,1 na NL de 183, foi possível observar a perda de trimetilamina (íon de m/z 749,6) e o ciclofosfano (íon de m/z 147,0). Finalmente, para o modo de íon negativo, foram isolados e fragmentados o íon de m/z 863,6 que foi atribuído como PI36:1, devido à presença de m/z 153 (fosfato de glicerol – H₂O-H ), 223 (inositol fosfo - 2H₂O-H) , 241 (fosfoinositol – H₂O-H), 281 (ácido oleico) e 581,3 (lisofosfoinositol – H₂O+H). Concluímos que a MALDI - MS permite a detecção de uma ampla gama de espécies de PC, SM, PE, PI e TAG lipídicas, bem como a caracterização rápida e confiante de estruturas lipídicas a partir de um único embrião equino.

The aim of this work was to report the potential of MALDI-MS for the characterization of lipid species present in a single equine embryo, and to study some lipid structures detected by collision induced dissociation (CID) experiments. In the positive ion mode spectrum, we could observe mostly protonated and sodiated species of sphingomyelins (SM), phosphatidylcholines (PC) and triacylglycerols (TAG). In the negative ion mode, we observed phosphatidylethanolamines (PE) and phosphatidylinositols (PI). MS/MS spectrum of most intense lipid ions was performed to show MALDI-MS/MS structural information potential. MS/MS spectrum in the positive mode of <em>m/z</em> 760.6 (attributed as PC34:1) depicted characteristic PC fragments of m/z 184.1 (choline polar head), and the neutral loss (NL) of 183 (phosphorylcholine). For the ion of <em>m/z</em> 766.6 (attributed as PE 38:5), we observed the NL of 140, characteristic of PE. For the ion of <em>m/z</em> 808.7 (attributed as PC 38.5), besides the fragment at m/z 184.1 at the NL of 183, it was possible to observe the loss of trimethylamine (ion of <em>m/z</em> 749.6), and the cyclophosphane (ion of <em>m/z</em> 147.0). Finally, for the negative ion mode, we isolated and fragmented the ion at <em>m/z</em> 863.6, which was attributed as PI 36:1 due to the presence of <em>m/z</em> 153 (glycerol phosphate – H₂O-H), 223 (phospho inositol – 2H₂O-H), 241 (phospho inositol – H₂O-H), 281 (oleic acid), and 581.3 (lysophosphoinositol – H₂O-H). We conclude that MALDI-MS allowed the detection of a broad range of PC, SM, PE, PI and TAG lipid species, as well as a fast and confident characterization of lipid structures from a single equine embryo.