Vitrificación de Ovocitos Bovinos Parcialmente Madurados de la Raza Frisón Rojo Chileno

Se evaluó la tasa de maduración in vitro post descongelación de ovocitos bovinos, de la raza Frisón Rojo Chileno, parcialmente madurados y vitrificados. Complejos Cúmulus-ovocito fueron obtenidos por aspiración folicular, clasificados morfológicamente y aleatoriamente cultivados in vitro en TCM199 (10 % Suero Fetal Bovino (SFB), 50 mg/mL gentamicina, 0,2 mM piruvato de sodio, 0,08 µg/mL FSH, 1 µg/mL LH y 1 µg/mL estradiol) en los grupos: a) control (n= 137), madurados por 24 h a 38,5 C, 5 % CO2 y 99 % humedad y, b) tratamiento (n= 156), madurados por 6 h, parcialmente denudados, e incubados hasta completar 20 h, para luego ser vitrificados por el método Open Pulled Straws (OPS). Los ovocitos fueron expuestos a la solución de vitrificación uno (SV1) (Buffer Fosfato Salino (PBS), 10 % Etilenglicol (EG), 10% DMSO) por 30 s, posteriormente traspasados a la SV2 (PBS, 20 % EG, 20 % DMSO) por 25 s. Inmediatamente los ovocitos fueron cargados en pajuelas francesas estiradas (OPS) y sumergidos en nitrógeno líquido. Las ovocitos fueron descongelados introduciéndolos en una secuencia de soluciones con concentraciones decrecientes de sucrosa (0,3; 0,15 y 0 M respectivamente). Finalmente, los ovocitos continuaron con la maduración por 4 h adicionales. Posterior al periodo de maduración, los ovocitos de ambos grupos fueron fijados, teñidos y evaluados. Las proporciones de ovocitos en Metafase I (MI), Metafase II (MII) y degenerados fueron comparadas mediante el test de Chi cuadrado. La vitrificación aumentó (p 0,05) el porcentaje de pérdida y de ovocitos dañados en comparación al control. Además, aumentó (p 0,05) la tasa de ovocitos en MI y el número de ovocitos degenerados, y redujo el porcentaje de ovocitos MII, en comparación al control. Por tanto, la vitrificación por el método Open Pulled Straw de ovocitos parcialmente madurados in vitro es una alternativa viable para la conservación de material genético de hembras Frisón Rojo Chileno.

Post thawing in vitro maturation rate was evaluated for partially matured vitrified oocytes from Chilean Red Friesian cattle. Cumulus-Oocytes Complexes were obtained by follicular aspiration, classified by morphology and randomly in vitro matured in TCM199 (10 % Bovine Fetal Serum (BFS), 50 mg/mL gentamicine, 0.2 mM sodium piruvate, 0.08 µg/ml FSH, 1 µg/mL LH and 1 µg/mL estradiol) in the following groups: a) control (n= 137), matured for 24 h at 38.5 C, 5 % CO2 y 99 % humidity, and b) treatment (n= 156), matured for 6 h, partially denuded, and incubated until completion of 20 h. Then, oocytes were vitrified by the Open Pulled Straws (OPS) method. Oocytes were exposed to vitrification solution one (VS1) (Phosphate Buffered Saline (PBS), 10 % Ethylen glycol (EG), 10 % DMSO) for 30 s, then they were exposed to VS2 (PBS, 20% EG, 20% DMSO) for 25 s. Afterwards, oocytes were loaded into open pulled straws and submerged into liquid nitrogen. Oocytes were thawed by exposure to sequential solutions with decreasing concentrations of sucrose (0.3; 0.15 y 0 M respectively). Finally, oocytes continued the in vitro maturation for 4 additional hours. After completion of maturation period oocytes from both groups were fixated, stained and evaluated. The proportion of lost and damaged, MI, MII, and degenerate oocytes were compared between groups by Chi square test. Vitrification procedure increased (p 0.05) the percentage of oocytes lost and damaged when compared to control group. Additionally, vitrification increased (p 0.05) the proportion of MI and degenerated oocytes, and decreased the proportion of MII oocytes. Therefore, vitrification by the OPS method of partially matured bovine oocytes is a reliable alternative for the conservation of germinal cells from Chilean Red Friesian females.