Incidence of Clostridium botulinum Spores in Honey and Infant Food Samples Collected from Vietnam and Germany | Vorkommen von Clostridium-botulinum-Sporen in Honig- und Säuglingsnahrungsproben aus Vietnam und Deutschland

Die Studie wurde durchgeführt, um ein Verfahren zu entwickeln, mit dem Sporen der unterschiedlichen C. botulinum Typen A, B, C, D, E und F in optimierten Medien hergestellt werden können. Eine Methode zum quantitativen Nachweis von C.-botulinum-Sporen in Honigproben wurde erarbeitet. Dieses Verfahren war die Grundlage für eine vergleichende Untersuchung über das Vorkommen von C. botulinum Sporen in Honig und Säuglingsnahrung. Proben dieser Lebensmittel wurden bei Einzelhändlern und Supermärkten in Ho Chi Minh Stadt, Vietnam und in Supermärkten in Deutschland gekauft. Das Ziel dieser Untersuchung war, festzustellen, ob Honig und Säuglingsnahrung eine mögliche Bedrohung für Säuglinge und Kleinkinder in Vietnam und Deutschland darstellen können. Zunächst wurde die Sporenproduktion der unterschiedlichen C.-botulinum-Typen A, B, C, D, E und F mit verschiedenen Nährmedien optimiert. Während Typ A in TM, Typ B in MAB, Typ D in SeM und Typ F in SM gut sporulierte, versporten Typ C und Typ E besser auf FAAE. Die Versporungsrate lag 80-100% in den flüssigen Medien und bei 70-90% auf Nährbodenplatten. Wurden die Sporen nach der Ernte in SSS resuspendiert, war erhöhte sich die Versporungsrate um 10-20%. Die Toxigenität der Sporen wurde nicht beeinflusst. Eine MPN-PCR Methode wurde entwickelt, um C.-botulinum-Sporen quantitativ im Honig zu bestimmen. Autoklavierte Honigproben wurden mit einer definierten Anzahl an Sporen der unterschiedlichen C.-botulinum-Typen entweder mit jedem Typ einzeln oder mit einer Mischung aller Typen versetzt. Zwei Kulturmedien, FAB und CMM, wurden als Anreicherungsmedien verwendet. Die Zahl der wieder gefundenen Sporen entsprach der zugegebenen Menge, unabhängig davon, ob nur ein Typ oder die Sporenmischung eingesetzt worden war. Zwischen den beiden Anreicherungsmedien wurden keine signifikanten Unterschiede beobachtet. Im zweiten Abschnitt wurde Honig und Säuglingsnahrung in Supermärkten in Ho Chi Minh Stadt, Vietnam, und in Deutschland gekauft und auf das Vorkommen von C.-botulinum-Sporen mittels PCR untersucht. Die amplifizierten Fragmente wurden durch Restriktionsenzymanalyse und DNA-Sequenzierung verifiziert, die Kulturen im Mäusebioassay geprüft. Zwanzig von 179 (11.2%) Proben der Säuglingsnahrung und 8 von 99 (8.1%) der Honigproben, die in Vietnam gesammelt worden waren, waren in der PCR positiv. Die höchste Anzahl von PCR-positiven Proben fanden sich bei Garnelen-/Fisch- (23.3%) und Obst-/Gemüse-Säuglingsnahrung (20%), während keine der Reis-/Soja-Nahrungen PCR-positiv war. Von 50 Schweinefleisch-/Huhn-Säuglingsnahrungsproben waren 5 (10%) PCR-positiv. Nur eine von 35 (2.9%) Milch-Säuglingsnahrungsproben war positiv.C. botulinum Typ C wurde am häufigsten in der Frucht/Gemüse- und der Garnelen/Fisch-Säuglingsnahrung gefunden, während Typ D in den Honigproben am häufigsten ermittelt wurde. Die Typen B und E wurden in verschiedenen Lebensmitteln gefunden. Mehr als ein Typ wurde in 10 Säuglingsnahrungs- und in zwei Honigproben nachgewiesen. Acht (davon 6 Säuglingsnahrungs- und 2 Honigproben) von 46 in Deutschland gekauften Proben enthielten C.-botulinum-Sporen. Alle Säuglingsmilchpulverproben waren negativ, während 4 der 9 Getreidenahrungsproben, eine von 8 Kartoffelpurée- und eine von 7 Gemüsenahrungsproben positiv für Typ B waren. Zwei Honigproben waren in der PCR positiv für Typen B und E. Obwohl alle PCR-positiven Proben im Mäusebioassay negativ waren, zeigten die Sequenzen ihrer PCR-Produkte eine hohe Homologie von 98-100% mit Datenbanksequenzen (GeneBank). Eine Säuglingsnahrung, die PCR-positiv für Typ C war, zeigte eine Sequenz, die nicht mit C. botulinum identisch war. Weitere Studien müssen durchgeführt werden, um ein mögliches Vorhandensein von C.-botulinum-Sporen mit stillen kodierenden Genen in Honig- und Säuglingsnahrungs-Proben zu untersuchen.

This study was carried out to develop a procedure for producing spore suspensions of different strains of C. botulinum A, B, C, D, E, and F was developed by applying different media. Moreover, a MPN-PCR method was developed to enumerate C. botulinum spores in honey samples, targeting the neurotoxin encoding genes. Another object of the study was the detection of viable C. botulinum spores in honey samples and infant foods purchased from retail stores and supermarkets in Ho Chi Minh City, Vietnam, and from retail supermarkets in Germany. The purpose of this survey was to determine if honey and infant foods in these market areas would present a potential threat to infants in Vietnam and Germany. The first phase of the study was carried out producing spores of different strains of C. botulinum A, B, C, D, E, and F. This was carried out using different media to enumerate spores of these strains in honey samples. Different strains sporulated best in different media. Type A strain 2298 sporulated well in trypticase medium (TM), type B strain 2299 in modified Anellis Broth (MAB), type D 2301 in Segner Medium (SeM), type F 2303 in sporulation medium (SM), type C 2300 and type E 2625 sporulated well on Fastidious Anaerobe Agar with Egg Yolk (FAAE). The sporulation rate was 80-100% in the liquid media and 70-90% on agar plates. The use of salt solution for sporulation (SSS) after harvesting the spores from the sporulation media increased the sporulation rate by 10-20%, but did not affect the toxigenicity of the spores. A MPN-PCR method was developed to enumerate C. botulinum spores in honey. Sterilised honey samples were spiked with a known number of spores of different strains of C. botulinum. Each strain was inoculated separately and there was also a mixture of all the strains. Two media, FAB and CMM, were used as enrichment media. The retrieved number of individual strains and mixed strain spores in the spiked samples after incubation was similar and proportional to the initial spore inoculation. This was regardless of the strain type, or if the sample had mixed strains of spores. The results were similar between the two enrichment media. In the second phase, honey and infant food samples were collected from supermarkets in Ho Chi Minh City, Vietnam and in Göttingen, Germany. These were tested for the presence of C. botulinum spores using PCR. For confirmation of the amplified fragments, DNA sequencing, restriction enzyme reaction, and MBA were carried out. Twenty of 179 (11.2%) infant food samples and 8 of 99 (8.1%) honey samples collected from Vietnam were PCR positive. The highest numbers of PCR-positive samples were shrimp/fish (23.3%) and fruit/vegetable (20%) infant foods. None of rice/soya bean infant foods was PCR positive. Out of 50 pork/chicken samples, five were found PCR positive (10%). Only one of 35 (2.9%) milk infant foods was positive. C. botulinum type C was most frequently found in fruit/vegetable and shrimp/fish infant foods, while type D was the most commonly detected in honey samples. Types B and E were obtained from various types of infant foods. More than one type was detected in ten infant foods and in two honey samples. Of 46 samples collected in Germany; eight, from which six were infant foods and two were honey samples, harboured spores of C. botulinum. All infant milk powder samples were negative, while four of nine infant cereal formula, one of eight potato purée, and one of seven vegetable formula samples were positive for type B C. botulinum. Two honey samples were found PCR positive for types B and E. Although all PCR-positive samples were MBA negative, comparison of the sequences of their amplified PCR products with published sequences of C. botulinum strains provided by the NCBI showed a high sequence homology of 98-100%. One type C PCR-positive sample showed a sequence that was not identical with C. botulinum Gene Bank entries. Further studies need to be conducted to investigate the possibility of C. botulinum spores with silent toxin encoding genes in strains of other types present in honey and infant food samples.