Estandarización del Sistema de Inmersión Temporal para la Regeneración In Vitro del Maíz Criollo (Zea Mays L.), Variedad “Rojo Cajibo”

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El maíz rojo cajibo, es una de las variedades criollas que se encuentran en el departamento de Santander y es considerado de importancia por los campesinos debido a sus características agronómicas, su uso en la alimentación, a la preservación de su cultura, y la economía campesina. Sin embargo, esta variedad criolla, se encuentra en peligro de extinción debido la inclusión de variedades genéticamente modificadas y a la falta de espacios que proporcionen la conservación; es por ello que se busca realizar la micropropagación de la variedad criolla de maíz “rojo cajibo” a través de la técnica de inmersión temporal tipo BIG, para ello se realizaron diferentes ensayos en los cuales se identificó que el proceso de desinfección del material vegetal óptimo está compuesto por Tween 80 al 2%, Etano al 70%, Hipoclorito al 1%, y 0,1 Gr Fungicida P Orthocide con tiempos de exposición de 10,3,5 y 10 minutos respectivamente, y que el medio de cultivo que brinda las características idóneas para su regeneración contiene Medio basal MS con 4 mg/L AIA; 8 mg/L 6-BAP; 2,6 mg AG3 suplementado con 2,5 mL de Agua de Coco y 4,2 g de Sacarosa (C12H22O11) con frecuencias y tiempos de inmersión de 8 horas y 8 minutos respectivamente.

Cajibo red corn is one of the native varieties found in the department of Santander and is considered important by farmers due to its agronomic characteristics, its use in food, the preservation of its culture, and the peasant economy. . However, this Creole variety is in danger of extinction due to the inclusion of genetically modified varieties and the lack of spaces that provide conservation; That is why it is sought to carry out the micropropagation of the Creole variety of "red cajibo" corn through the BIG type temporary immersion technique, for which different tests were carried out in which it was identified that the optimal plant material disinfection process It is made up of 2% Tween 80, 70% Ethane, 1% Hypochlorite, and 0.1 Gr Fungicide P Orthocide with exposure times of 10, 3.5 and 10 minutes respectively, and that the culture medium provided the ideal characteristics for its regeneration contains mean basal DM with 4 mg / L IAA; 8 mg / L 6-BAP; 2.6 mg AG3 supplemented with 2.5 mL of Coconut Water and 4.2 g of Sucrose (C12H22O11) with frequencies and immersion times of 8 hours and 8 minutes respectively.

Maestría

Magister en Biotecnología

1 ed

1. Introducción............................................................................................................. 13 2. Problema de investigación...................................................................................... 15 2.1 Planteamiento Del Problema................................................................................. 15 2.2 Justificación......................................................................................................... 17 3. Objetivos.................................................................................................................. 19 3.1 Objetivo General.................................................................................................. 19 3.2 Objetivos Específicos............................................................................................ 19 4. Marco teórico........................................................................................................... 20 4.1 Cultivo In Vitro....................................................................................................... 20 4.2 Fases del Cultivo In Vitro.................................................................................. 20 4.2.1 Fase I (Iniciación)............................................................................................ 21 4.2.2 Fase II (Multiplicación)..................................................................................... 21 4.2.3 Fase III (Acondicionamiento para el trasplante a tierra)..................................... 21 4.3 Métodos de Regeneración de Tejidos Vegetales.................................................. 22 4.3.1 Embriogénesis Somática................................................................................. 22 4.3.2 Organogénesis................................................................................................ 22 4.3.3 Organogénesis Directa...................................................................................... 23 4.3.4 Organogénesis indirecta................................................................................. 23 4.4 Sistemas De Multiplicación In Vitro.................................................................. 23 4.5 Clases De Sistema De Inmersión Temporal ....................................................... 24 4.5.1 Biorreactores Tipo BIT....................................................................................... 24 4.5.2 Biorreactores Tipo BIG....................................................................................... 25 4.5.3 Biorreactores Tipo RITA..................................................................................... 26 4.6 El Maíz............................................................................................................. 27 4.6.1 Morfología...................................................................................................... 28 4.6.2 Fisiología......................................................................................................... 28 4.7 Maíz en Colombia.............................................................................................. 29 4.8 Maíces Criollos en Colombia......................................................................... 31 4.9 Maíces criollos en Santander........................................................................... 32 5. Marco Conceptual.................................................................................................. 35 6. Marco de Antecedentes....................................................................................... 37 7. Metodología......................................................................................................... 41 7.1 Fase I. Selección Del Proceso De Desinfección Del Maíz Criollo (Zea Mays L.), Variedad “Rojo Cajibo”............................................................................................ 41 7.1.1 Obtención del Material Vegetal y Prueba de Viabilidad............................... 41 7.1.2 Desinfección..................................................................................................... 42 7.2 Fase II. Identificación de la Fase de Establecimiento del Maíz (Zea Mays L.) Criollo Variedad “Rojo Cajibo”................................................................................. 44 7.3 Fase III. Evaluación del Tiempo y la Frecuencia Óptima para la Regeneración In Vitro del Maíz (Zea Mays L) Criollo Variedad “Rojo Cajibo”...................................... 45 7.4 Análisis estadístico.......................................................................................... 46 8. Resultados y Discusión....................................................................................... 47 8.1 Fase I. Selección del Proceso de Desinfección del Maíz Criollo (Zea Mays L.), Variedad “Rojo Cajibo”................................................................................................ 47 8.1.1 Material Vegetal y Prueba de Viabilidad..................................................... 47 8.1.2 Desinfección de Semillas de Maíz “Rojo Cajibo”............................................ 48 8.2 Fase II. Identificación de la fase de establecimiento del maíz (Zea mays L.) Criollo variedad “Rojo Cajibo”............................................................................................... 50 8.3 Fase III. Evaluación del Tiempo y la Frecuencia Óptima para la Regeneración In Vitro del Maíz (Zea Mays L) Criollo Variedad “Rojo Cajibo”..................................... 52 8.3.1 Sistema De Inmersión Temporal Tipo BIG................................................... 52 8.3.2 Medición de las Variables..................................... 54 9. Conclusiones Generales..................................................................................... 61 Referencias Bibliográficas....................................................................................... 62 Apéndices............................................................................................................. 66