Frecuencia de fotogramas óptima para evaluar la cinética espermática de verracos con un sistema CASA-Mot

Испанский язык; кастильский. Resumen Introducción. La movilidad es el indicador de calidad seminal más utilizado, por tanto, es necesario determinar una adecuada frecuencia de fotogramas (frame rate, FR) para estandarizar los análisis cinéticos con los equipos de análisis computadorizado de semen (CASA-Mot) y disminuir la variabilidad entre laboratorios, lo que optimizará el número de dosis seminales y su calidad para la industria porcina basada en inseminación artificial (IA). Objetivo. Determinar la frecuencia óptima de fotogramas sobre la cinética espermática de verraco mediante un sistema comercial CASA-Mot y analizar la distribución de subpoblaciones espermáticas con el FR óptimo. Materiales y métodos. Se utilizaron veinte dosis seminales de diez verracos Pietrain (Sus scrofa domestica). El periodo experimental fue entre febrero y julio del año 2017. Se utilizó el sistema CASA-Mot (ISAS®v1) con cámaras de recuento ISAS®D4C20 precalentadas a 37 °C. El tiempo de captura fue de dos segundos. Resultados. La frecuencia de fotogramas afectó los parámetros de cinética espermática, exceptuando la velocidad rectilínea (VSL), debido a que no representó un comportamiento dependiente del FR. Las demás variables presentaron alteraciones significativas al cambiar su FR, y la velocidad curvilínea (VCL) y velocidad promedio (VAP) fueron las variables más sensibles al cambio. Se obtuvieron tres componentes principales (PC) definidos por patrones de movilidad, progresividad y oscilación, en donde el PC1 (velocidad-ondulación) fue el más influyente, debido a que representó el 51,34 % y 55,08 % de la varianza total explicada para 25 y 200 fps (fotogramas por segundo), respectivamente. Conclusión. La frecuencia óptima de fotogramas para analizar variables de cinética espermática en verraco con un sistema CASA-Mot fue de 200 fps. Una tasa de fotogramas inferior provoca errores en la estimación de la trayectoria de los espermatozoides. La distribución de subpoblaciones espermáticas varía según la tasa de fotogramas utilizada. Es necesario establecer un protocolo de análisis para homogenizar los resultados.

Английский. Abstract Introduction. Motility is the most used seminal quality indicator, therefore, it is necessary to determine an adequate frame rate (FR) to standardize kinetic analysis with computerized semen analysis equipment (CASA-Mot) and reduce variability between laboratories, which will improve the number of seminal doses and their quality for the swine industry based on artificial insemination (AI). Objective. To determine the optimal frame rate frequency on boar sperm kinetics using a commercial CASA-Mot system and to analyze the distribution of sperm subpopulations with the optimal FR. Materials and methods. Twenty seminal doses of ten Pietrain boars (Sus scrofa domestica) were used. The experimental period was between February and July 2017. The CASA-Mot system (ISAS®v1) was used with ISAS® D4C20 counting chambers preheated to 37 °C. The video capture time was two seconds. Results. The frame rate affected the sperm kinetic parameters, except for the rectilinear velocity (VSL), because it did not represent a FR-dependent behavior. The other variables presented significant alterations when changing their FR, and curvilinear velocity (VCL) and average path velocity (VAP) were the most sensitive values to the change. Three principal components (PC) defined by patterns of motility, progressiveness and oscillation were obtained, where the PC1 (velocity-undulation) was the most influential since it represented 51.34 % and 55.08 % of the total explained variance for 25 and 200 fps (frames per second), respectively. Conclusion. The optimal frame rate to analyze sperm kinematics variables in boar semen with a CASA-Mot system was 200 fps. A lower frame rate causes errors in the sperm trajectory estimation. The sperm subpopulation distribution changes according to the frame rate used. It is necessary to establish an analysis protocol to homogenize the results.