Criopreservação do sêmen de quatis (Nasua nasua) | Coatis (Nasua nasua) semen cryopreservation

Portugués. Os procedimentos de criopreservação do sêmen em carnívoros devem ser iniciados após a lavagem e centrifugação em meios de cultura para retirada do plasma seminal e eliminação de microrganismos. O objetivo deste estudo foi realizar a criopreservação do sêmen de quatis comparando os efeitos entre dois extensores Ham’s F-10 e M199 para lavagem e centrifugação do sêmen antes do congelamento com o meio Dilutris. Amostras de sêmen (n = 36) foram coletadas por eletroejaculação em seis quatis (Nasua nasua) machos adultos entre maio e outubro de 2008, no Zoológico da Universidade Federal de Mato Grosso. Motilidade total (%), motilidade espermática progressiva (0-5), integridade da membrana plasmática (%) e integridade do acrossoma (%) foram analisados. Amostras de sêmen a fresco foram divididas em duas frações, diluídas em 1 mL de Ham’s F-10 (Ham’s F-10, Nutricel S.A., Brasil) ou M199 (M199, Nutricel S.A., Brazil) e centrifugado a 300 g por 10 min. O sobrenadante foi descartado e pellets ressuspendidos em 1 mL de Dilutris (Dilutris, Minitube®, Brasil), armazenados a 5ºC durante 3 horas, transferidos para palhetas de 0,25 mL, colocadas em vapor de nitrogênio líquido por 20 min e imersos em nitrogênio líquido. Os resultados para sêmen a fresco e sêmen congelado utilizando Ham’s F-10/Dilutris e M199/Dilutris foram, respectivamente: 84,28 ± 11,57, 45,38 ± 27,26 e 44,61 ± 25,03 para motilidade total; 3,64 ± 1,44, 2,15 ± 1,14 e 2,07 ± 1,03 para a motilidade progressiva; 92,76 ± 3,46, 84,69 ± 15,77 e 89,76 ± 13,97 para integridade da membrana plasmática; e 94,76 ± 2,89, 92,35 ± 4,73 e 90,58 ± 7,17 para integridade do acrossoma. Não houve diferença significativa (P < 0,05) entre os valores obtidos nos tratamentos Ham’s F-10/Dilutris ou M199/Dilutris. Ambos os tratamentos demonstraram ser adequados para a congelação de sêmen desta espécie.

Inglés. Carnivore semen cryopreservation procedures started with semen washing and centrifuging in culture media for seminal plasma removal and microorganisms elimination. The objective of this study was to perform coatis semen cryopreservation comparing the effects between two extenders Ham’s F-10 and M199 for washing and centrifugation before cryopreservation using Dilutris medium. Semen samples (n = 36) were collected by electroejaculation from six adult male coatis (Nasua nasua) between May and October of 2008 at the Universidade Federal de Mato Grosso Zoo. Sperm total motility (%), progressive sperm motility (0-5), plasma membrane integrity spermatozoa rates (%), and acrosome integrity (%) were analyzed. These fresh semen samples were divided in two fractions, diluted in 1 ml of Ham’s F-10 (Ham’s F-10, Nutricel S.A., Brazil) or M199 (M199, Nutricel S.A., Brazil) and centrifuged at 300 g for 10 min. The supernatant was discarded and pellets resuspended in 1 ml of Dilutris (Dilutris, Minitube®, Brazil), stored at 5ºC for 3 hours, transferred to 0.25 ml straws, placed in liquid nitrogen vapor for 20 min, and immersed in liquid nitrogen. The means/SD for fresh semen and cryopreserved semen using Ham’s F-10/Dilutris and M199/Dilutris were, respectively: 84.28 ± 11.57, 45.38 ± 27.26, and 44.61 ± 25.03 for total motility; 3.64 ± 1.44, 2.15 ± 1.14, and 2.07 ± 1.03 for progressive sperm motility; 92.76 ± 3.46, 84.69 ± 15.77, and 89.76 ± 13.97 for live spermatozoa rate; and 94.76 ± 2.89, 92.35 ± 4.73, and 90.58 ± 7.17 for acrosome integrity. No significant difference (P < 0.05) were observed between the values obtained from the Ham’s F-10/Dilutris or M199/Dilutris treatments. Both treatments demonstrated to be suitable for freezing semen from this species.