The influence of the state of water in plant tissue on the physico- chemical properties of plant products and processes occurring in it was studied. It is shown that the ratio of free and bound water fractions in the tissue influences the mass loss of plant products during storage. The ratio between free and bound water in the plant tissue depends on the activity of physiological processes in it, which determines the intensity of the loss of nutrients.

When working with pollen, it is important to keep its functional parameters for some time. To do this, it is necessary to select the best conditions to preserve microgametophyte germination. The influence of two methods of pollen collection and storage of inbred plants of beetroot on their functional characteristics, at germination on an artificial nutrient medium under in vitro conditions was studied. In the first variant pollen was harvested from full-blown flowers in sealed sample bottles, in the second variant small branches with flowers and large buds were separated from inflorescence, placed in paper and then in polyethylene bags and stored till germination in a refrigerated heating circulator at 10-12 deg. C (control is freshly harvested pollen). It is shown that when storing pollen in sample bottles, the pollen viability decreased 3-10 times depending on a sample compared to the initial value already on the second or third days, and after a week of storage, pollen conglomerated, the number of burst pollen grains in the preparation increased. When stored in flowers and in branch buds on the seventh to eighth days, the decrease in pollen viability was no more than 30% of the control, and the growth rate of the pollen tube in most samples remained approximately at the control level. And the sample distribution pattern as to microgametophyte viability retained. The linear dependence covariance coefficient between the viability values before and after week-long storage was R2=0.94. That is, for evaluating the functional microgametophyte parameters of inbred beetroot plants , it is recommended to store pollen directly in branches of blossom placed in paper and then in polyethylene bags at a reduced temperature of 10-12 deg C. This is important when working with a large set of samples where it is not possible to compare them at the same time. | Важным условием при работе с пыльцой является сохранение ее функциональных параметров в течение определенного времени, для чего необходимо подобрать оптимальные условия, позволяющие сохранять жизне- и оплодотворяющую способность микрогаметофита. С этой целью изучено влияние двух способов сбора и хранения пыльцы инбредных растений свеклы столовой на ее функциональные характеристики при проращивании на искусственной питательной среде в условиях in vitro. В первом варианте пыльцу собирали с распустившихся цветков в герметично закрываемые бюксы, во втором – отделяли от соцветия небольшие веточки с цветками и крупными бутонами, помещали их бумажные, а затем в полиэтиленовый пакеты и хранили до проращивания в хладотермостате при 10…12 град. С (контроль – свежесобранная пыльца). Показано, что при хранении пыльцы в бюксах уже на вторые-третьи сутки жизнеспособность (ЖСП) в зависимости от образца снижалась в 3-10 раз по сравнению с исходным значением, а после недельного хранения она слипалась в конгломераты, и увеличивалось число лопнувших пыльцевых зерен в препарате. При хранении в цветках и бутонах на веточках снижение ЖСП на 7-8-е сутки хранения составляло не более 30% от контроля, а скорость роста пыльцевой трубки у большинства образцов оставалась на уровне контрольной. При этом характер распределения образцов по уровню ЖСП микрогаметофита сохранялся. Коэффициент ковариации линейной зависимости между значениями ЖСП до и после недельного хранения составил R2=0,94. То есть, для оценки функциональных параметров микрогаметофита инбредных растений свеклы столовой рекомендуется хранение пыльцы непосредственно на цветущих веточках, помещенных в бумажные, а затем в полиэтиленовый пакеты, при пониженной положительной температуре 10-12 град. С. Это важно при работе с большим набором образцов, когда нет возможности провести их сравнительный анализ единовременно.